Institut NeuroMyoGène
    Laboratoire Physiopathologie et Génétique du Neurone et du Muscle
    CNRS UMR 5261 -INSERM U1315
    Université de Lyon - Université Claude Bernard Lyon 1
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ENVIRONNEMENT DES CELLULES SOUCHES MUSCULAIRES ET HOMÉOSTASIE DU MUSCLE STRIÉ SQUELETTIQUE

Notre objectif est d’identifier de nouvelles fonctions pour les cellules situées dans le micro-environnement des cellules musculaires au-delà de leur propriétés canoniques (e.g., régulation de l’inflammation par les macrophages, délivrance d’oxygène et de nutriments par les cellules vasculaires) et comment les cellules souches musculaires et les myofibres sont contrôlées par leur environnement le plus proche dans des contextes normal et pathologique. L’identification de nouvelles molécules ou de nouvelles fonctions pour des voies moléculaires déjà connues permettrons d’étendre notre savoir sur l’homéostasie du muscle strié squelettique et sa physiopathologie.

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muscle strié squelettiquecellules souches musculaires microenvironment macrophages vaisseaux myopathies

L’ÉQUIPE
  • Bénédicte CHAZAUD
    DR INSERM, HDR
  • Clara BERNARD
    DOCTORANTE
  • Aurélie FESSARD
    AI CNRS
  • Julien GONDIN
    CR CNRS, HDR
  • Dieu-Huong HOANG
    DOCTORANTE
  • Charline JOMARD
    DOCTORANTE
  • Gaetan JUBAN
    POST-DOCTORANT
  • Sandrine MAGAT
    IE UCBL
  • Georgania PANCI
    DOCTORANTE
  • Pawandeep SINGH
    DOCTORANT
  • Michèle WEISS-GAYET
    IE CNRS
  • Aliki ZAVORITI
    DOCTORANTE

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PROJETS

Les cellules souches adultes sont impliquées dans le maintien et la réparation des tissus tout au long de la vie. Elles jouent des rôles particulièrement importants dans le muscle strié squelettique, qui possède une grande plasticité et des propriétés de régénération pour conserver ses paramètres physiologiques constants (homéostasie). Le muscle sain mobilise des cellules souches endogènes, principalement les cellules satellites, pour réparer les myofibres endommagées. La régénération opérée par les cellules souches musculaires est cruciale pour l’homéostasie du muscle, tout comme les mécanismes qui permettent leur autorenouvellement afin de maintenir leur pool constant dans le tissu.

La question clé que nous explorons est l’environnement tissulaire au sein duquel les cellules souches musculaires sont activées et réalisent la myogenèse adulte. Ce micro-environnement joue des rôles importants dans le comportement des cellules souches musculaires et des cellules myogéniques, bien que les mécanismes soient encore peu connus. Plusieurs types cellulaires, localisés à proximité des cellules souches, communiquent avec elles pour contrôler la régénération musculaire. Nous analysons les rôles des cellules immunes (inflammation), des cellules endothéliales et péri-endothéliales (angiogenèse) et des cellules interstitielles (fibrose) sur le comportement et le devenir des cellules myogéniques à la fois au cours de la régénération du muscle sain et dans plusieurs contextes pathologiques (dystrophies musculaires, cachexie). En effet, les pathologies musculaires sont caractérisées par une altération de l’environnement des cellules musculaires, comme la présence d’une inflammation chronique ou d’une fibrose, qui sont délétères pour la régénération du tissu et son homéostasie.

Environnement des cellules souches musculaires (B. Chazaud)

La régénération musculaire est associée à la présence de macrophages. Deux types de macrophages sont présents au cours de la régénération musculaire. Juste après le dommage musculaire, les monocytes inflammatoires entrent dans la zone lésée. Ces macrophages inflammatoires stimulent la prolifération des cellules précurseurs myogéniques. Plus tard, ils changent leur phénotype pour devenir des macrophages anti-inflammatoires, qui soutiennent la différenciation myogénique et la croissance des nouvelles fibres myogéniques. Les macrophages peuvent être considérés comme un support stromal pour les cellules myogéniques, qui stimulent les étapes séquentielles de la régénération musculaire. Nos travaux se concentrent sur les mécanismes moléculaires qui régulent l’état inflammatoire et les fonctions des macrophages au cours de ce processus. Nous étudions également les rôles et l’identité des populations macrophagiques au cours des myopathies dégénératives, dans lesquelles elles sont associées à la fibrose.
Nous étudions également les interactions entre les cellules souches musculaires et les cellules vasculaires, puisque les cellules satellite sont localisées à proximité des capillaires sanguins dans le muscle normal. Les cellules endothéliales et les précurseurs myogéniques interagissent pour stimuler réciproquement leur croissance et leur différenciation. A l’inverse, les cellules péri-endothéliales (cellules musculaires lisses) stimulent l’autorenouvellement des cellules souches et leur maintien en quiescence. Nous cherchons à définir les régulations moléculaires gouvernant le couplage entre angiogenèse et myogenèse au cours de la régénération musculaire normale, et à comprendre si ces interactions sont altérées, et comment, au cours des myopathies.

L’électrostimulation neuromusculaire pour lutter contre la cachexie (J. Gondin)

La cachexie est une conséquence fréquente de nombreuses pathologies chroniques, comme le cancer et le choc septique. La réduction drastique de la masse musculaire squelettique a pour conséquence d’augmenter la morbidité et la mortalité. De plus, les divers traitements, la sédation et/ou l’alitement prolongé peuvent exacerber le déconditionnement musculaire. Dès lors, il apparaît primordial de développer des protocoles de reconditionnement musculaire pour prévenir ou atténuer la perte de masse musculaire squelettique des patients. Notre objectif est d’étudier si et dans quelle mesure l’électrostimulation neuromusculaire est une thérapie efficace pour promouvoir la croissance musculaire et augmenter la production de force dans des modèles précliniques de cachexie. Le programme vise à établir des protocoles rigoureux pour exploiter le bénéfice de l’électrostimulation sur la fonction musculaire et à identifier les mécanismes cellulaires et moléculaires sous-jacents.


SÉLECTION DE PUBLICATIONS
  • Annexin A1 drives macrophage skewing to accelerate muscle regeneration through AMPK activation. McArthur S, Juban G, Gobbetti T, Desgeorges T, Theret M, Gondin J, Toller-Kawahisa JE, Reutelingsperger CP, Chazaud B, Perretti M, Mounier R. J Clin Invest, 2020 Mar 2;130(3):1156-1167
  • Open-CSAM, a new tool for semi-automated analysis of myofiber cross-sectional area in regenerating adult skeletal muscle. Desgeorges T, Liot S, Lyon S, Bouvière J, Kemmel A, Trignol A, Rousseau D, Chapuis B, Gondin J, Mounier R, Chazaud B, Juban G. Skelet Muscle, 2019, 9(1):2
  • AMPK Activation Regulates LTBP4-Dependent TGF-β1 Secretion by Pro-inflammatory Macrophages and Controls Fibrosis in Duchenne Muscular Dystrophy. Juban G, Saclier M, Yacoub-Youssef H, Kernou A, Arnold L, Boisson C, Ben Larbi S, Magnan M, Cuvellier S, Théret M, Petrof BJ, Desguerre I, Gondin J, Mounier R, Chazaud B. Cell Rep, 2018, 25:2163-2176
  • Myogenic Progenitor Cells Exhibit Type I Interferon-Driven Proangiogenic Properties and Molecular Signature During Juvenile Dermatomyositis. Gitiaux C, Latroche C, Weiss-Gayet M, Rodero MP, Duffy D, Bader-Meunier B, Glorion C, Nusbaum P, Bodemer C, Mouchiroud G, Chelly J, Germain S, Desguerre I, Chazaud B. Arthritis Rheumatol, 2018, 70:134-145
  • Macrophage-derived superoxide production and antioxidant response following skeletal muscle injury. Le Moal E, Juban G, Bernard AS, Varga T, Policar C, Chazaud B, Mounier R. Free Radic Biol Med, 2018, 20;120:33-40
  • Coupling between Myogenesis and Angiogenesis during Skeletal Muscle Regeneration Is Stimulated by Restorative Macrophages. Latroche C, Weiss-Gayet M, Muller L, Gitiaux C, Leblanc P, Liot S, Ben-Larbi S, Abou-Khalil R, Verger N, Bardot P, Magnan M, Chrétien F, Mounier R, Germain S, Chazaud B. Stem Cell Reports, 2017, 9:2018-2033
  • AMPKa1-LDH pathway regulates muscle stem cell self-renewal by controlling metabolic homeostasis. Theret M, Gsaier L, Schaffer B, Juban G, Ben Larbi S, Weiss-Gayet M, Bultot L, Collodet C, Foretz M, Desplanches D, Sanz P, Zang Z, Yang L, Vial G, Viollet B, Sakamoto K, Brunet A, Chazaud B, Mounier R. EMBO J, 2017, 36:1946-1962
  • Macrophage PPARγ, a Lipid Activated Transcription Factor Controls the Growth Factor GDF3 and Skeletal Muscle Regeneration. Varga T, Mounier R, Patsalos A, Gogolák P, Peloquin M, Horvath A, Pap A, Daniel B, Nagy G, Pintye E, Póliska S, Cuvellier S, Larbi SB, Sansbury BE, Spite M, Brown CW, Chazaud B, Nagy L. Immunity, 2016, 45:1038-1051
  • Myeloid HIFs are dispensable for resolution of inflammation during skeletal muscle regeneration. Gondin J, Theret M, Duhamel G, Pegan K, Mathieu JR, Peyssonnaux C, Cuvellier S, Latroche C, Chazaud B, Bendahan D, Mounier R. J Immunol, 2015, 194:3389-3399
  • AMPKalpha1 regulates macrophage skewing at the time of resolution of inflammation during skeletal muscle regeneration. Mounier R, Theret M, Arnold L, Cuvellier S, Bultot L, Goransson O, Sanz N, Ferry A, Sakamoto K, Foretz M, Viollet B, Chazaud B. Cell Metab, 2013, 18:251-264

FINANCEMENTS
  • Agence Nationale de la Recherche
  • Association Française contre les Myopathies
  • Cancéropôle Lyon Auvergne Rhône-Alpes (CLARA)
  • CNMD Ottawa / INMG
  • CNRS
  • European Joint Programme on Rare Diseases (EJPRD)
  • Fondation pour la Recherche Médicale
  • Fondation ARC pour la recherche sur le cancer
  • INSERM
  • Ligue Contre le Cancer
  • Université de Lyon – Université Claude Bernard Lyon 1

   

Email

benedicte.chazaud@inserm.fr

Téléphone

+33 4 26 68 82 49

Adresse

Institut NeuroMyoGène
UCBL – CNRS UMR 5261 – INSERM U1315
Faculté de Médecine et de Pharmacie – 3ème étage – Couloir AH
8 Avenue Rockefeller
F-69008 Lyon


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