PROJETS

L’équipe développe 2 thèmes de recherche fondamentaux et 2 thèmes de recherche translationels :

• Régulation de l’expression des gènes musculaires par l’innervation motrice
• Signalisation TGFb/mTOR dans le muscle
• Mécanismes physiopathologiques des maladies neuromusculaires
• Identification de biomarqueurs pour les maladies neuromusculaires

PRINCIPALES RÉALISATIONS 2005-2015

RÉGULATION DE L’EXPRESSION DES GÈNES MUSCULAIRES PAR L’INNERVATION MOTRICE

• i) L’histone deacetylase 9 participe au couplage entre l’activité neuronale, l’acetylation de la chromatine et l’expression des gènes musculaires (Méjat et al., 2005).
• ii) La chromatine post synaptique est sous contrôle neural à la jonction neuromusculaire (Ravel Chapuis et al., 2007).
• iii) La répression de l’expression des gènes musculaires par l’activité électrique est médiée par le co-represseur transcriptionel CtBP (Thomas et al., 2015).
• iv) L’histone deacetylase HDAC6 est un nouvel atrogène et un effecteur aval des facteurs de transcription FoxO dans l’atrophie musculaire (Ratti et al., 2015).

JONCTION NEURO-MUSCULAIRE ET POSITIONNEMENT NUCLEAIRE

• Les nesprins contrôlent la position des noyaux et la densité des récepteurs postsynaptiques dans le muscle squelettique (Morel et al. 2014)

RÔLE DE LA SIGNALISATION PI3K/mTOR DANS LE MUSCLE STRIÉ

• i) Etablissement de la carte d’interactome de la voie PI3K (Pilot-Storck et la., 2010).
• ii) La protéine CKIP-1 à domaine pleckstrine relie la signalisation PI3K à l’organisation du cytosquelette d’actine au cours de la différenciation musculaire (Baas et al., 2012).
• iii) Dans le muscle adulte, mTOR contrôle le métabolisme énergétique et l’expression de la dystrophine (Risson et al., 2009; Romanino et al., 2011).
• iv) Le récepteur d’autophagie NBR1 est régulé par GSK3 et dé-régulé dans les protéinopathies musculaires (Nicot et al., 2014).

RECHERCHE TRANSLATIONELLE

• i) Identification d’un nouveau gène responsable d’un syndrome myasthénique congénital (Huze et al., 2009).
• ii) Développement d’un test cellulaire pour la détection d’anticorps non conventionnels dans les myasthénies auto immunes (Devic et al., 2014).

SÉLECTION DE PUBLICATIONS

• Novel Intronic Mutation in VMA21 Causing Severe Phenotype of X-Linked Myopathy with Excessive Autophagy-Case Report.
  A. Pegat, N. Streichenberger, N. Lacoste, M. Hermier, R. Menassa, L. Coudert, J. Theuriet, R. Froissart, S. Terrone, F. Bouhour, L. Michel-Calemard, L. Schaeffer and A. Jacquier.
  Genes (2022) DOI: 10.3390/genes13122245
• Immune-Mediated Rippling Muscle Disease Associated With Thymoma and Anti-MURC/Cavin-4 Autoantibodies.
  J. Svahn , L. Coudert , N. Streichenberger, A. Kraut , A. Gravier-Dumonceau-Mazelier, L. Rotard , L. Calemard-Michel, R. Menassa, E. Errazuriz-Cerda, L. Chalabreysse, A. Osseni, C. Vial, L. Jomir, F. Tronc, D. Le Duy, E. Bernard, V. Gache, Y. Couté, V. Jacquemond, L. Schaeffer, P. Leblanc.
  Neurology: Neuroimmunology & Neuroinflammation (2023) DOI: 10.1212/NXI.0000000000200068
• Pharmacological inhibition of HDAC6 improves muscle phenotypes in dystrophin-deficient mice by downregulating TGF-β via Smad3 acetylation.
  A. Osseni, A. Ravel-Chapuis, E. Belotti, I. Scionti, Y-G. Gangloff, V. Moncollin, L. Mazelin, R. Mounier, P. Leblanc, B. J. Jasmin & L. Schaeffer.
  Nature Communications (2022) DOI: 10.1038/s41467-022-34831-3
• Expanding the phenotypic variability of MORC2 gene mutations: From Charcot-Marie-Tooth disease to late-onset pure motor neuropathy.
  A. Jacquier, S. Ribault, M. Mendes, N. Lacoste, V. Risson, J. Carras, P. Latour, A. Nadaj-Pakleza, T. Stojkovic, L. Schaeffer.
  Human Mutation (2022) DOI: 10.1002/humu.24445
• Severe congenital myasthenic syndromes caused by agrin mutations affecting secretion by motoneurons.
  A. Jacquier · V. Risson · T. Simonet · F. Roussange · N. Lacoste · S. Ribault · J. Carras · J. Theuriet · E. Girard · I. Grosjean · L. Le Goff · S. Kröger · J. Meltoranta · S. Bauché · D. Sternberg · E. Fournier· A. Kostera-Pruszczyk ·E. O’Connor · B. Eymard · H. Lochmüller · C. Martinat · L. Schaeffer.
  Acta Neuropathologica (2022) doi: 0.1007/s00401-022-02475-8
• The ESCRT-0 subcomplex component Hrs/Hgs is a master regulator of myogenesis via modulation of signaling and degradation pathways.
  L. Coudert, A. Osseni, Y. G. Gangloff, L. Schaeffer and P. Leblanc.
  BMC Biology (2021) doi: 10.1186/s12915-021-01091.
• HDAC6 regulates microtubule stability and clustering of AChRs at neuromuscular junctions.
  Osseni A, Ravel-Chapuis A, Thomas JL, Gache V, Schaeffer L, Jasmin BJ.
  J Cell Biol (2020) doi: 10.1083/jcb/201901099.
• H2A.Z is dispensable for both basal and activated transcription in post-mitotic mouse muscles.
  Belotti E, Lacoste N, Simonet T, Papin C, Padmanabhan K, Scionti I, Gangloff YG, Ramos L, Dalkara D, Hamiche A, Dimitrov S and Schaeffer L. Nucleic Acids Research (2020) doi: 10.1093/nar/gkaa157.
• Phosphorylated and aggregated TDP-43 with seeding properties are induced upon mutant Huntingtin (mHtt) polyglutamine expression in human cellular models.
  Coudert L, Nonaka T, Bernard E, Hasegawa M, Schaeffer L, Leblanc P Cell Mol Life Sci. (2019) doi: 10.1007/s00018-019-03059-8.
• Lack of muscle mTOR kinase activity causes early onset myopathy and compromises whole-body homeostasis.
  Zhang Q, Duplany A, Moncollin V, Mouradian S, Goillot E, Mazelin L, Gauthier K, Streichenberger N, Angleraux C, Chen J, Ding S, Schaeffer L, Gangloff YG. J Cachexia Sarcopenia Muscle (2019) 10:35-53. DOI: 10.1002/jcsm.12336.
• LSD1 Controls Timely MyoD Expression via MyoD Core Enhancer Transcription.
  Scionti I, Hayashi S, Mouradian S, Girard E, Esteves de Lima J, Morel V, Simonet T, Wurmser M, Maire P, Ancelin K, Metzger E, Schüle R, Goillot E, Relaix F, Schaeffer L. Cell Rep. (2017) 18(8):1996-2006.
• Muscle inactivation of mTOR causes metabolic defects and dystrophin downregulation leading to a severe myopathy.
  Risson V, Mazelin L, Roceri M, Sanchez H, Moncollin V, Corneloup C, Richard-Bulteau H, Vignaud A, Baas D, Defour A, Freyssenet D, Tanti J-F, Le-Marchand-Brustel Y, Ferrier B, Duplany A, Romanino K, Bauché S, Hanta? D, Mueller M, Kozma SC, Thomas G, Rüegg MA, Ferry A, Pende M, Bigard X, Koulmann N, Schaeffer L, Gangloff YG. J.Cell.Biol. (2009) 187:859-874.
• Histone Deacetylase 9 participates in the coupling of neuronal activity to muscle chromatin acetylation and gene expression.
  Méjat A, Ramond F, Bassel Duby R, Khochbin S, Olson EN, and Schaeffer L. Nature Neurosci (2005) 8(3):313-21.

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